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常见问题

RT-PCR实验中常见的7个问题

作者:荧光定量PCR仪   发布时间:2020-05-22

    Real time PCR做为常规PCR的衍生反应,主要是通过荧光信号的变化实时监测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过ct值和标准曲线的关系对起始模板进行定量分析。
    RT-PCR的具体数据就是基线(baseline),荧光阈值(threshold)和Ct值。 第 3-15 个循环的荧光值就是基线(baseline),是由于测量的偶然误差引起的。阈值(threshold)是指在扩增曲线的指数增长区域内的适当位置上设定的荧光检出界限,一般是基线的标准偏差的 10 倍。Ct 值就是每个反应管里的荧光值达到阈值时的 PCR 循环次数。Ct 值跟初始模板的量成反比。
    Real time PCR 的标记方法一般包括以下几类:荧光染料嵌合法(SYBR Green I)和荧光探针法(Taqman探针)和分子信标法。
    SYBR Green I 法
    SYBR Green I 法
    Taqman探针法
    Taqman探针法
    分子信标法
    分子信标法
    三种荧光定量PCR方法的应用比较
    应用比较
    荧光定量PCR的主要应用
    原理清楚了,接下来就是实验操作及数据分析了。就在这一步,RT-PCR准备了很多大坑静待我们跳进去。难怪之前的学长要告诉小鱼,这个实验做多了,很有可能会成为思想家。果不其然,小鱼在这个实验上失败了N多次且寻觅原因无果后,便开启了哲学模式,一开口就是些人生感悟,满满的沧桑感。
    那么RT-PCR究竟难在哪里呢?又该怎么处理呢?
    1.优质RNA的获取
    2.特异性引物设计
    3.TaqMan探针的设计和荧光标记物选择
    4.标准曲线分析
    一般,DNA样品的定量标准品为基因组DNA&质粒,RNA样品的定量标准品为Total RNA&cDNA&体外转录RNA。绘制标准曲线的标准品梯度的选择一般为5——6个梯度,标准品的稀释倍数通常为10。
    5.熔解曲线分析
    SYBR Green I 法进行检测时,可根据熔解曲线确认PCR产物的特异性。曲线横坐标是温度,纵坐标是荧光强度的变化值(不是强度本身)。其原理是依据温度从60度升至90度时,荧光强度的变化值。当温度达到PCR产物的Tm(双链DNA分子解链一半时的温度)时,荧光强度变化最大(峰值)。
    6.绝对定量分析方法
    绝对定量中,LOG(起始浓度)与循环数呈线性关系,通过已知起始拷贝数的标准品可制作出标准曲线,即得到该扩增反应存在的线性关系。然后根据样品的Ct值,来确定未知样品的初始模板拷贝数或浓度。通常用于病毒、细菌、衣原体、支原体的定量检测及转基因食品的检测。
    其中,标准品的稀释方法与拷贝数计算如下图所示:
    7.相对定量分析方法
    相对定量用于测定单个样品基因的差异表达分析或者比较两个或两个以上样品中某个基因表达量的变化,则其结果必须用内对照基因(管家基因)校正。管家基因通常指维持细胞基本代谢活动所必须的基因,如GAPDH/Actin/18s rRNA等,实际操作中可依据文献或具体实验进行筛选。相对定量的分析方法主要有两种:双标准曲线法和2^-△△Ct法。
    双标准曲线法:
    每次实验都要分别用标准品做内参基因和目的基因的标准曲线,并同时扩增各待测样本中的目的基因和内参基因。然后使用标准曲线来计算待测样本中的目的基因和内参基因的表达量。最后通过公式就可以计算出目的基因的表达差异了。
    双标准曲线法
    2^-△△Ct法
    这是最常用的进行相对基因表达分析的方法,得到的结果是实验组中目的基因相对于对照组中目的基因表达的差异倍数。要求目的基因和内参基因的扩增效率相同,且相对偏差不超过 5%。
    2^-△△Ct法
    若是目的基因和内参基因的扩增效率不一样时,可以套用以下公式来计算基因表达的差异。
    公式来计算基因表达的
    其中,E1:目的基因引物扩增效率;E2:内参基因引物扩增效率;△Ct1:实验组目的基因Ct值差;△Ct2:对照组目的基因Ct值差。(E1=E2=1时,该公式=2^-△△Ct)
    如此下来,小伙伴是否觉得Real-time PCR并没有想象中那么难呢?那就快快行动起来,一举把该实验拿下吧!

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